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Célula viva


Durante décadas, la única solución para estudiar el comportamiento de ciertos componentes celulares, ha sido aislarlos por fraccionamiento y purificación. En otras ocasiones, la solución ha pasado por fijar la célula en un momento fisiológico completo, para poder aplicar diferentes técnicas de estudio. Pero estas “fotos fijas” no permiten averiguar de forma directa como interaccionan entre si los componentes de una célula única, o como interacciona una célula con sus vecinas. Los potentes desarrollos técnicos de los últimos años, nos permiten actualmente incluso observar como una única molecula de proteína interacciona, en tiempo real, con sus vecinas, o seguir al microscopio, durante un tiempo prolongado (“timelaps” ) el comportamiento e interacciones de una serie de células.

El empleo de técnicas adaptadas al estudio de “Célula Viva” está revolucionando y cambiando los conceptos clásicos de la Biología Celular a gran velocidad.

Célula viva | Izasa Scientific

Ensayos "Time-lapse"

Acea_iCELLigence_xCELLigence_IzasaScientific

iCELLigence & xCELLigence

Sistemas con biosensores microeléctricos para realizar ensayos celulares

Acea Biosciences es una compañía americana con base en San Diego que desarrolla sistemas con biosensores microeléctricos para realizar ensayos celulares. Su tecnología pionera basada en medidas de impedancia eléctrica en micro-electrodos permite llevar a cabo experimentos de viabilidad celular, citotoxicidad, adhesión, migración, invasión, latido de cardiomiocitos, rastreo de compuestos, etc. Entre las características principales de estos equipos destacan:

• Ensayos celulares de alta precisión con datos fisiológicamente relevantes
• Toma de datos siempre en tiempo real
• Ensayos celulares sin necesidad de marcar las células
• Numerosas aplicaciones y más de 400 publicaciones avalan su tecnología
 

Modelos disponibles:


RTCA SP: Utiliza una placa de 96 pocillos
RTCA MP: Utiliza seis placas de 96 pocillos
RTCA HT: Utiliza una placas de 384 pocillods
RTCA DP: Utiliza tres placas de 16 pocillos. Posibilidad de hacer ensayos de invasión y migración.
RTCA Cardio: Utiliza un placa de 96 pocillos para monitorizar el latido de cardiomiocitos
iCELLigence: Utiliza dos placas de 8 pocillos. Se controla por iPAD vía Wifi.

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Nikon_BIOSTATION-IM-Q_IzasaScientific

BIOSTATION IM-Q

El sistema de incubación celular compacto Nikon BioStation IM-Q permite que los usuarios con experiencia mínima en microscopía puedan realizar experimentos con células vivas sin mayor dificultad.

Posibilita la realización de una gran variedad de experimentos time-lapse, tanto a corto como a largo plazo, incluyendo estudios de crecimiento celular, morfología o expresión de proteínas entre otros.

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Nikon_Eclipse-Ti-E_IzasaScientific

Microscopio Invertido Eclipse Ti-E

Modelo completamente automatizado de alta exigencia destinado a aplicaciones de investigación avanzada.

Dispone de mandos de control a ambos lados de la base y en la parte frontal del estativo, para el accionamiento de los componentes del microscopio sin necesidad de una consola externa. 

  • Permite ser conectado a un ordenador que controle electrónicamente, mediante el software de accionamiento y manipulación Ti - Tools, todos los componentes susceptibles de motorización presentes en el sistema.
  • Incluye los adaptadores para acoplar los elementos necesarios para la técnica de observación de epi-fluorescencia.
  • El estativo Ti-E dispone de 3 puertos de salidas de luz: el de visualización ocular y dos destinados a la captura de imagen con dispositivos externos, uno a cada lado del estativo). Todos los puertos de luz se encuentran motorizados y pueden ser controlados tanto desde los mandos del propio estativo como desde el software. Un sistema de prismas motorizados se encarga del direccionamiento del 100% de la luz a cada uno de los puertos laterales o hacia el tubo binocular. Adicionalmente permite direccionar un 20% de la luz hacia los oculares y un 80% de la luz hacia el puerto izquierdo.
  • Motorización del eje Z, con control retroactivo de un decodificador lineal, controlable desde software con una resolución mínima de 25 nm y velocidad de avance de 2,5 mm/segundo.
  • Mando de accionamiento manual de una lente de magnificación (1,5 x) intermedia.
     


Encendido y apagado del sistema de transiluminación, regulación de su intensidad mediante un potenciómetro de rueda.
Desplazamiento motorizado del eje Z en tres rangos : macro-, micro- y ultramicrométrico.
Cambio de objetivo mediante giro del revólver.
Cambio de filtros para epi-fluorescencia mediante giro de la torreta que los aloja.
Encendido y apagado del obturador de epi-fluorescencia externo (si lo hubiere)
Mando de accionamiento de la función de Escape y Reenfoque mediante desplazamiento vertical del revólver.
Selección del canal de salida de luz del estativo hacia los puertos de captura de imagen o visualización ocular.
Pantalla LCD fluorescente para la presentación de las condiciones de observación en uso, también en oscuridad. Además, el panel de control posibilita la ejecución de modos de observación previamente programados.

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Andor_SpinningDiskDragonfly_IzasaScientific

Spinning Disk Dragonfly

El equipo confocal Spinning Disk Andor DragonFly permite la visualización de las muestras con una combinación difícil de imitar de velocidad, sensibilidad, confocalidad y relación señal/ruido.

La combinación de velocidad y sensibilidad del equipo permite la realización de aplicaciones tan diversas como molécula única, confocal de célula viva, TIRF o la visualización de embriones enteros.
 

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